blog

L'imaging dinamico dimostra che i campi elettromagnetici pulsati (PEMF) sopprimono la trascrizione di IL-6 nelle cellule

L'imaging dinamico dimostra che i campi elettromagnetici pulsati (PEMF) sopprimono la trascrizione di IL-6 nelle cellule

J Orthop Ris.2018 febbraio;36(2):778-787.  doi: 10.1002/jor.23713. Epub 2017 17 ottobre.

Xinyan Tang 1, Tamara Alliston 1, Dezba Coughlin 1, Stefania Miller 1, Nianli Zhang 2, Erik I Waldorff 2, James T Ryaby 2, Jeffrey C Lotz 1

Affiliazioni

  • 1Dipartimento di Chirurgia Ortopedica, Università della California San Francisco, San Francisco, California.
  • 2Orthofix Inc., Lewisville, 75056, Texas.

Astratto

Le citochine infiammatorie svolgono un ruolo dominante nella patogenesi della degenerazione del disco. I campi elettromagnetici pulsati (PEMF) sono stimoli biofisici non invasivi che sono stati ampiamente utilizzati nel campo ortopedico per molti anni. Tuttavia, le risposte cellulari specifiche ei meccanismi coinvolti non sono ancora chiari. L'obiettivo di questo studio era di valutare gli effetti PEMF dipendenti dal tempo sull'espressione del fattore pro-infiammatorio IL-6 nelle cellule del nucleo polposo del disco utilizzando un nuovo sistema reporter della proteina a fluorescenza verde (GFP). 

È stato costruito un sistema reporter GFP con tag MS2 guidato dal promotore IL-6 per visualizzare l'effetto del trattamento PEMF sulla trascrizione di IL-6 in singole cellule viventi. Le cellule marcate con IL-6-MS2 sono state trattate con IL-1α per imitare l'ambiente infiammatorio in situ del disco degenerativo mentre contemporaneamente sono state esposte a PEMF continuamente per 4 ore. 

L'imaging time-lapse è stato registrato utilizzando un microscopio confocale per monitorare l'attività di trascrizione dinamica di IL-6 che è stata dimostrata da GFP. Infine, è stata eseguita la RT-PCR in tempo reale per confermare i dati di imaging. L'imaging cellulare vivo ha dimostrato che il fattore pro-infiammatorio IL-1α ha promosso significativamente la trascrizione di IL-6 nel tempo rispetto alla condizione del mezzo basale DMEM. I dati di imaging e PCR hanno dimostrato che l'effetto induttivo di IL-1α sull'espressione di IL-6 potrebbe essere significativamente inibito dal trattamento con PEMF in modo dipendente dal tempo (presto 2 ore dall'inizio dello stimolo). 

I nostri dati suggeriscono che la PEMF può avere un ruolo nella gestione clinica dei pazienti con lombalgia cronica. Inoltre, questo studio mostra che il sistema di reporter GFP con tag MS2 è uno strumento utile per visualizzare gli eventi dinamici della meccanobiologia nella ricerca muscoloscheletrica. 

© 2017 Gli autori. Journal of Orthopaedic Research® Pubblicato da Wiley Periodicals, Inc. per conto della Orthopaedic Research Society. J Orthop Ris 35:778-787, 2018.

Figura 1 Schema dei costrutti MS2 utilizzati in questo studio. Plasmide A) Plasmide della proteina di fusione PGK-MS2-GFP, esprime la proteina di fusione MS2-GFP; L'mRNA reporter del plasmide B, esprime una sequenza ripetuta MS2 × 24 guidata dal promotore IL-6 (IL-6-RFP-MS2). Le singole cellule trasfettate (plasmide A, lato sinistro) hanno mostrato una fluorescenza verde diffusa concentrata all'interno del nucleo cellulare a causa della sequenza di localizzazione nucleare (NLS); Nelle cellule co-trasfettate (lato destro), la proteina di fusione co-esprime con l'mRNA reporter contenente siti di legame MS2. La proteina di fusione si lega in modo specifico a una delle 24 copie del motivo RNA contenuto nella sequenza ripetuta MS2 × 24. Il legame risultante di più copie della proteina di fusione MS2-GFP all'mRNA forma particelle di colore verde brillante nelle cellule (particolarmente indotte dal fattore pro-infiammatorio IL-1α).


JOR-36-778-g002jpg

Figure 2 Visualization of dynamic mRNA expression in individual live cells. A1) Illustration of IL‐6 expression ON and OFF in MS2‐GFP system. A2) Single GFP particles in living cells after transfection. B) GFP particle distribution in single living cells after co‐transfection (both in the cytoplasm and nucleus); White dots represent GFP particles that are tracked with Imaris software. C) Dynamic imaging of GFP in nucleus of living cells after co‐transfection (induced by IL‐1α) for 400 min. Exposure time is reduced to visualize the particulate nature of the intense nuclear stain.

JOR-36-778-g003jpg
Figure 3 Flow cytometry verifying the GFP and RFP profile in MS2‐GFP fusion and mRNA reporter system. A) Control, without transfection. B) MS2‐GFP fusion plasmid single transfection C) IL‐6‐RFP‐MS2 plasmid single transfection D) Co‐transfection (n = 3/group). MFI = mean fluorescence intensity.

JOR-36-778-g004jpg

Figure 4 Dynamic images demonstrating the effects of IL‐1α alone and IL‐α + PEMF treatment on IL‐6 expression. PEMF dosing started at 2 h after IL‐1α treatment.



JOR-36-778-g005jpg

Figure 5 Quantification of IL‐1α and PEMF treatment effects by calculating GFP particle number over time (n = 9/group). PEMF dosing started at 2 h after IL‐1α treatment (blue arrow) and turned off at 6 h (red arrow). Significant differences between IL‐1α and IL‐1α + PEMF group starts at 2hr (p < 0.01). Loss of significance occurred between IL‐α + PEMF and DMEM groups at 3.5 h (p < 0.05).

JOR-36-778-g006jpg

Figure 6 Real time RT‐PCR validation for PEMF and IL‐1 α treatment effects. # represents p = 0.07; ** represents p < 0.01. n = 3 for biological replicates and n = 3 technical replicates.

JOR-36-778-g007jpg